血清和血浆的制备
      取血量与重复取血周期的关系
      同一只小鼠需要多次采血
      由于小鼠体重限制，一次取血后需要一定的恢复期以保证下次血液样本的质量，严格遵守动物福利也是操作者的基本要求。小鼠的总血量一般是占体重的6-7%，一次性取血10%不会引起造血系统过度活化及血液成分的重建。（例：若20克小鼠，它的总血量约占1.2-1.4毫升，即每次取120ul-140ul血液不会对小鼠有太大的影响）。
      小鼠只需采单次采血
      但如果想取小鼠的全血，一般能取体重的4%已经很不错了。具体的参考计算：小鼠体重*6-7%（血液占体重百分比）*70%（循环血量占全部血量百分比）*90%（可以取到的循环血量比例）
      常用的采血的方法
      眼眶后静脉丛采血
      （大鼠 0. 4~0. 6 mL,小鼠 0. 2~0. 3 mL）取内径为1.0-1.5mm的玻璃毛细管，临用前折断成2～2.5cm长的毛细管段，浸入1％肝素溶液中，干燥后用。取血时左手抓住鼠两耳之间的颈背部皮肤以固定头部，轻轻向下压迫颈部两侧，引起头部静脉血液回流困难使眼眶静脉丛充血，右手持毛细管由内眦部插入结膜，再轻轻向眼底部方向推进，轻轻旋转毛细管以划破静脉丛，让血液顺毛细管流出，接收入事先准备的容器中。采血后纱布轻压眼部止血。
      摘眼球采血
      此法常用于鼠类大量采血。采血时,用左手固定动物,压迫眼球，尽量使眼球突出，右手用镊子或止血钳迅速摘除眼球，眼眶内很快流出血液。
      尾尖采血
      （小鼠可每次采血约0.1ml，大鼠约0.4ml）剪断尾巴进行取血。注意，剪下来一点就可以，小鼠1-2mm，大鼠3-5mm，流出血液收集即可。过程中可以捋尾巴。血液可以用于涂片，试纸检测血糖等。
      心脏采血
      （大鼠 1~1. 5 mL,小鼠 0. 5~0. 8 mL）心脏采血为无菌采血，采血量大，此方法需在麻醉状态下进行，操作时，选择胸部左侧心脏博动最强处进针，缓慢回抽针筒可见血液流入针管。
      后肢隐静脉采血
      隐静脉采血常用于大小鼠的少量血液采集,单次采血的安全采血量为动物体重的0. 5%,间隔一天多次采血采血量为动物体重的0. 05%,隐静脉采血无需麻醉,待动物固定后,后腿外侧区域剃毛后暴露采血点,采血针刺入采血点,即可获得血液样本。
      断头采血
      左手拇指和食指从背部抓住鼠颈部皮肤，将鼠头朝下，右手用剪刀剪断鼠颈部约1/2-4/5，让血液流入试管。但有由于过于血腥加上动物福利的原因，此方法不建议使用。
      血清及血浆的制备
      血清分离
      经上述的方法取得血液后，在EP管中室温静置一小时以上（或37°水浴1小时，4°冰箱静置2小时或者过夜）以3000rpm离心10分钟，上清即为血清。可在-80°保存。
血浆分离
      使用烘干的肝素管或者有少量液体的肝素抗凝管，将得到的全血与抗凝剂充分混匀，经过3000rpm离心力10分钟得到的上清即为血浆样本。可在4°保存几点，若在-20°或-80°可保存更久，但要测乳酸脱氢酶活性的话，必须要取血后立即测，以获得准确的结果。
      溶血
      正常的血清或者血浆样本为黄色清液，而若为偏红，即为有红细胞破裂而产生溶血现象。
      避免溶血应注意以下的事项：
      1. 采血时要避免小鼠毛发、油脂沾染血液导致溶血，所用的容器、注射器必须清洁干燥，不能有水或者有机溶剂。
      2. 抽血时速度不要太快，速度太快会有气泡产生。如果使用止血带时，止血带不要扎的太久。
      3. 抽出的血放入试管时，要先拔掉针头再放血，同时速度不要太快。
      4. 收集分离血清的全血时应尽量使血液直接进入小管底部，避免管壁或管盖上的血液在离心过程中导致溶血