一、腹水的采集
      动物取自然站立位固定。穿刺部位在耻骨前缘与脐之间，腹中线两侧。剪毛、消毒，局部浸润麻醉。操作者左手拇、示指紧绷穿刺部位的皮肤，右手控制穿刺深度做垂直穿刺。注意不可刺得太深，以免刺伤内脏。穿刺针进入腹腔后，腹水多时可见腹水因腹压高而自动流出。腹水少可轻轻回抽，并同时稍稍转动一下针头，一旦有腹水流出，立即固定好针头及注射器的位置连续抽吸。抽腹水时注意速度不可太快，腹水多时不要一次大量抽出，以免因腹压突然下降导致动物出现循环功能障碍等问题。
      二、唾液的采集
      在急性实验中，可用吸管直接插入动物口腔或唾液腺导管抽吸唾液。此法非常简单，但从口腔抽吸唾液会有杂质混入。
      三、胃液的采集
      1．直接收集胃液法  急性实验时，先将动物麻醉，如果是犬，可以用插胃管法收集胃液；如是大鼠，需手术剖腹，从幽门端向胃内插入一塑料管，再由口腔经食管将一塑料管插入前胃，用pH7.0、35℃左右的生理盐水，以12ml／h的流速灌胃，收集流出液，进行分析。
      2．制备胃瘘法  在慢性实验中，收集胃液多用胃瘘法，如全胃瘘法、巴氏小胃瘘法、海氏小胃瘘法等。制备小胃是将动物的胃分离出一小部分，缝合起来形成小胃，主胃与小胃互不相通，主胃进行正常消化，从小胃可收集到纯净的胃液。应用该法，可以待动物恢复健康后，在动物清醒状态下反复采集胃液。