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关于实验动物腹水的采集方法分享
分类:
行业新闻
发布时间:
2020/12/02
【摘要】:
一、腹水的采集
动物取自然站立位固定。穿刺部位在耻骨前缘与脐之间,腹中线两侧。剪毛、消毒,局部浸润麻醉。操作者左手拇、示指紧绷穿刺部位的皮肤,右手控制穿刺深度做垂直穿刺。注意不可刺得太深,以免刺伤内脏。穿刺针进入腹腔后,腹水多时可见腹水因腹压高而自动流出。腹水少可轻轻回抽,并同时稍稍转动一下针头,一旦有腹水流出,立即固定好针头及注射器的位置连续抽吸。抽腹水时注意速度不可太快,腹水多时不要一次大量抽出,以免因腹压突然下降导致动物出现循环功能障碍等问题。
二、唾液的采集
在急性实验中,可用吸管直接插入动物口腔或唾液腺导管抽吸唾液。此法非常简单,但从口腔抽吸唾液会有杂质混入。
三、胃液的采集
1.直接收集胃液法 急性实验时,先将动物麻醉,如果是犬,可以用插胃管法收集胃液;如是大鼠,需手术剖腹,从幽门端向胃内插入一塑料管,再由口腔经食管将一塑料管插入前胃,用pH7.0、35℃左右的生理盐水,以12ml/h的流速灌胃,收集流出液,进行分析。
2.制备胃瘘法 在慢性实验中,收集胃液多用胃瘘法,如全胃瘘法、巴氏小胃瘘法、海氏小胃瘘法等。制备小胃是将动物的胃分离出一小部分,缝合起来形成小胃,主胃与小胃互不相通,主胃进行正常消化,从小胃可收集到纯净的胃液。应用该法,可以待动物恢复健康后,在动物清醒状态下反复采集胃液。
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